本站大部份資料在 2016 年後就未更新，若資料內無明確標示資料時間，請預設該資料為過時資料並斟酌使用，謝謝
| column | value |
|---|---|
| 類別 | 食品輸入及查驗登記 |
| 法規性質 | 法規命令 |
| 法規名稱 | 健康食品之胃腸功能改善評估方法 |
| 條文內容 | <span style="font-family: arial;"><p style="text-align: center;"><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">健康食品之胃腸功能改善評估方法 </span></strong></p><p style="margin: 0cm -7.7pt 0pt 0cm; text-align: right;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">880802</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">衛署食字第88037803號公告 <br></br>920829衛署食字第0920401629號公告修正<strong> </strong></span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">壹、前言 </span></strong></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">消化器官的主要功能是使食物消化，營養素吸收及排便。消化最主要是經由消化酵素的作用，自律神經的調節及體液性的調節(消化管荷爾蒙等)等系統來控制。因此，除了病原菌的侵襲外，各種飲食內容的改變及精神壓力或過敏都會引起胃腸道的不適，影響食物的消化及營養素的吸收。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人類的腸道中棲息了約數百種細菌，這些正常菌相的存在，除了可抑制有害病菌在腸內孳生及危害外，且可產生人體所需的物質，如維生素B 及K等。在人體正常菌相中，包含了有益菌與有害菌，有益菌產生的代謝產物（如乳酸與醋酸）可抑制有害菌的增殖，對健康的維持與整腸方面有相當的幫助。一般健康人體腸道中有害細菌（如產氣莢膜梭菌<em><span>Clostridium perfringens</span></em>）含量不高，無法危害人體，然而身體的不適，飲食及環境的變化、精神壓力、老化等都可能使有害菌增加，造成腸內菌相平衡的崩解，進而引起便祕、下痢。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">食品種類繁多，其中部份食品可改善食慾，促進消化酵素的分泌，增進胃腸蠕動，增加小腸吸收。食品亦可因含有利腸道益生菌生長的成份，或本身含有腸道中的有益細菌，因而具改善腸內菌相的功能。因此，若食品具有(1) 促進消化吸收，(2) 改善腸內細菌菌相，(3)促進胃腸蠕動，幫助維持腸道正常機能等三種功能中任一種功能時，可認為具有改善胃腸道功能。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">貳、實驗方法及結果判定 </span></strong></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">一、評估對胃腸道功能改善之要點與原則： </span></strong></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (</span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">一)</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">改善胃腸功能必須明確具有以下四種功能指標之ㄧ。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">促進消化吸收 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">改善腸內細菌菌相<strong> </strong></span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 3.</span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">幫助（改善）胃腸運動</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 4.</span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">有助於胃黏膜之保護作用</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (</span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">二)</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">所進行的實驗可分為動物實驗與人體實驗，兩者可擇一施行。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (</span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">三)</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">若廠商所提產品的相關科學研究證據不明確或不足時，須同時進行「人體實驗」和</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 「動物實驗」，以加強證據之可信度。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> （四）</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">動物實驗進行時間至少需4星期以上，人體實驗至少需進行2星期以上。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> （五）</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">所使用的實驗動物以哺乳類動物為原則。動物隻數每組至少為8隻，小白鼠隻數每</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 組至少為10隻。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（六）</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">實驗動物必須來自各大實驗動物中心。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> （七）</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人體實驗每組人數至少為8人，且必須有控制組。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> （八）</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人體實驗必須由大學食品、營養、醫藥等相關系所、研究機構、醫學中心執行，</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 需有醫師參與，並遵循衛生單位對人體實驗有關之相關規定。<strong> </strong></span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> （九）</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">動物實驗進行時，飼料的內容與比例必須符合AIN（American Institute of <br></br></span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> Nutrition）之規範，進行人體實驗的飲食內容與比例必須符合衛生署所公佈之飲食指南。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> （十）</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">評估對胃腸道功能所採用的實驗方法，必須是學術界或醫學單位所採用或普遍認</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 可之方法，亦可使用市售的生化試劑(Test Kit)直接測定之。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">二、促進消化吸收 </span></strong></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">一)動物實驗 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">動物體重的測定及消化吸收率的測定 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">消化酵素活性的測定:如trypsin, chymotrypsin, amylase, lipase, leucine amino peptidase, disaccharidase。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">二)人體實驗<strong>： </strong></span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1 .</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">有關改善食慾不佳方面，觀察食慾、食量、體重、血紅素等指標的變化。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">有關改善消化吸收不良方面，觀察食慾、食量、胃腸腹脹感、糞便形狀及次數、胃腸運動及小腸吸收等指標變化。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">三)結果判定<strong>： </strong></span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">動物實驗中必須至少一項指標為實驗組明顯優於控制組(p<0.05)。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人體實驗方面，如果是針對改善兒童食慾方面，以食慾、食量的改善為觀察重點。體重及血紅素的變化則作為輔助指標。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 3.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">針對消化吸收不良者，除了有明顯改善食慾、食量，胃腸腹脹感及糞便形狀等消化不良症狀外，在小腸吸收指標中至少有一項指標為實驗組明顯優於控制組(p<0.05)。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 4.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">如果符合以上要求即可判定測試食品具有促進消化吸收作用。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">(</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">四)測定方法 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">消化酵素活性測定 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">樣品製備： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">截取實驗老鼠(Sprague-Dawley或Wistar品系) 小腸片段，刮下腸黏膜(脂解酵素活性測定不必刮下腸黏膜)，取0.2 g加入2 mL含protease抑制劑(1 mM phenylmethylsulfonylfluoride及2.2 mM iodoacetic acid) 之4<sup>o</sup>C、0.9% NaCl溶液，以均質機均質化。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (1)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">雙醣酵素 (disaccharidase) 活性測定 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">目的：測定小腸雙醣類消化酵素(乳糖酵素、麥芽糖酵素與蔗糖酵素)活性。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">測定方法：取30 mL的腸黏膜均質液加入15 mL的56 mM雙醣溶液(乳糖、麥芽糖或蔗糖)於37<sup>o</sup>C下作用30分鐘，再加入100 mL的 0.6 N NaOH溶液溶解細胞，另以10 mL 的6 N HCl溶液中和之。取45 mL處理過後之腸黏膜液或葡萄糖標準液(0-40 mg/mL)與625 mL反應緩衝液(50 mM Tris-malate、33 mM sodium potassium phosphate與30 mM MgCl<sub>2</sub>，pH 6.8)、150 mL的1 mM ATP、150 mL的1 mM NADP、15 mL的330 IU/mL hexokinase (EC 2.7.1.11)與15 mL的170 IU/mL glucose-6-phosphate dehydrogenase (EC 1.1.1.49) 於37<sup>o</sup>C下作用30分鐘，最後將樣品置於冰浴上以終止其反應。葡萄糖產物含量則以分光光度計於340 nm波長下測定減少的NADPH，並以改良的Lowry方法測定樣品中蛋白質含量，而雙醣酵素活性以 mM 葡萄糖/分鐘/mg 蛋白質表示之。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (2)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">脂解酵素 (lipase) 活性測定 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">目的：測定小腸內脂質消化酵素活性 </span></p><h1><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">測定方法﹕用市售試劑組(Sigma Lipase-PSä)測定之。將900 mL受質溶液(1.1 mM 1,2-diglyceride、2 mM sodium N-ethyl-N-(2-hydroxy-3-sulfopropyl)-m-toluidine、0.66 mM ATP、860 U/L monoglyceride lipase、1340 U/L glycerol kinase、40,000 U/L glycerol-3-phosphate oxidase、1340 U/L horseradish peroxidase、40,000 U/L co-lipase 與緩衝液)加至15 mL之腸均質液或標準液(附於試劑組)中，於37oC下作用3-5分鐘，再加入300 mL活化劑(36 mM deoxycholate、6 mM 4-aminoantipyrine、0.05% sodium azide與緩衝液)，於37oC下作用3分鐘後，以分光光度計於550 nm波長下測定2分鐘，並以改良的Lowry方法測定樣品中蛋白質含量，而脂解酵素活性以unit/mg 蛋白質表示之。 </span></h1><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (3)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">白胺酸胺基酵素 (leucine aminopeptidase，LAP) 活性測定 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">目的：測定小腸絨毛刷狀緣膜上蛋白質消化酵素活性。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">測定方法﹕用市售試劑組(Sigma Diagnosticsâ LAP)測定之。取0.5 mL腸黏膜均質液，混合0.5 mL LAP受質溶液(20 mg/dL L-leucyl-b-naphthylamine溶於phosphate緩衝液，pH 7.1)，於37oC下作用1小時，再加入0.5 mL的2 N HCl，1.5 mL處理過後之腸黏膜液或1.5 mL標準液(0-12 Sigma unit/mL)與0.5 mL sodium nitrite溶液，於室溫下作用3分鐘後，混合1.0 mL 0.5% (w/v) ammonium sulfamate，於室溫下作用3分鐘，再加入2.0 mL N-1-naphthylethylenediamine酒精溶液，於室溫下作用45分鐘後，以分光光度計於580 nm波長下測定吸光值，並以改良的Lowry方法測定樣品中蛋白質含量，而白胺酸胺基之酵素活性以Sigma unit/mg 蛋白質表示之。1 Sigma unit定義為於37oC、pH 7.1下，每1小時生成1 mmole b-naphthylamine的酵素量。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">判定：以上各一項有改善，表示有改善胃腸消化之功能。 </span></p><p style="margin-top: 0cm;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">改善胃腸功能之參考指標： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (1)Lundh</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">測試（主要為胰臟功能）： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">使用300 ml之流質食物（含6％脂肪﹑5％蛋白質及15％醣類），並放置十二指腸管，依時段抽取十二指腸液，以測定消化酵素之濃度（如Trypsin）或以內視鏡抽取胰液作消化酵素之分析。 </span></p><p style="margin: 3pt 0cm 0pt 9pt;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (2)Schilling</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">測試（主要為胃腸功能） </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－以維生素B12之吸收來測定胃腸功能 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－以放射性標示之維他命B12給予空腹之受試者 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－一小時後再由肌肉注射未標示B12</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－24小時後收集尿液，並測定B12含量 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－7天後重複此步驟，但口服B12則加入Intrinsic factor</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－兩次檢查加以比較評估 <br></br> (3)脂肪之吸收判定： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">糞便脂肪分析： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－正常值：< 7g/day</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－每日食用食物中至少有100 g中鏈三酸甘油酯共三天；並收集糞便3天 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－測定糞便中脂肪含量 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－使用Sudan stain，只可測三酸甘油酯及lipalytic product</span></p><p style="margin: 3pt 0cm 0pt;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (4)D-xylose</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">耐受測試（主要為小腸功能）： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－主要測定近端小腸之醣類吸收 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－隔夜禁食，再服用25g之D-xylose，5小時後之尿液中若xylose排出大於25％，即表示正常。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－1及2小時抽血，若其中一次大人血中xylose>300 mg/L，或小孩血中xylose >100 mg/L，則表示正常。 <br></br><br></br> (5)核子醫學檢查 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">目前只使用於gastric emptying study<br></br> <br></br> －受試者服下含有放射源（Tc-99m and In-111）的固體及液體食物 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－測量受試者90分後的胃排空率 <br></br><br></br> (6)放射線科檢查 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">小腸排空速度檢測 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">－受試者喝下600 cc barium後，隔15分透視一次，直到barium完全排出ileocecal valve</span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">三、改善腸內細菌 <br></br></span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> <br></br></span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（一）動物實驗： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">檢測1種益生菌：<em><span>Bifidobacterium</span></em> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">檢測1種有害（或無益）菌：<em><span>Clostridium perfringens</span></em> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（二）人體實驗： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">檢測1種益生菌：<em><span>Bifidobacterium</span></em> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">檢測1種有害（或無益）菌：<em><span>Clostridium perfringens</span></em> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（三）測定方法： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">腸內細菌菌相 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (1)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">材料 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> A.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> a.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">大白鼠：雄性 Spraguae Dawley（SD）或Wistar系統大白鼠之盲腸或糞便。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> b.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人體糞便。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> B.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">培養基 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> a. </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">雙叉桿菌（Bifidobacteria）參考培養基： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (a) Bifidobacteria iodoacetate medium –25</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（BIM-25） </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (b) MPN medium </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (c) Beerens medium </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> b. </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">產氣莢膜梭菌（<em><span>Clostridium perfringens</span></em>）參考培養基 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> Tryptose-sulfite-D-cycloserine</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（TSC）agar </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">有關製備請參考各相關參考文獻。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (2)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">方法 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> A.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">取樣及均質 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (a)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">動物實驗:：以按摩方式收集糞便於密閉容器內（維持厭氧狀態），再於厭氧操作箱內秤取約0.5 g，加入含4.5 mL無菌厭氧稀釋液(附註)之試管中（內含5粒玻璃珠），以試管震盪器混合。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (a)-1</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">大白鼠經餵養試驗後，麻醉，解剖，在厭氧狀況取出盲腸（cecum）內容物，秤取約1 g，加入含9 mL無菌厭氧稀釋液之試管中（內含5粒玻璃珠），以試管震盪器混合。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (b)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人體試驗：收集糞便於密閉容器內（維持厭氧狀態），再於厭氧操作箱內，進行如同上述大白鼠樣品之秤重及均質操作。 <br></br> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> B.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">稀釋及微生物平板分析 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">於厭氧狀況下，上述均質液以厭氧稀釋液進行一系列十倍稀釋。取適當稀釋倍數，以表面塗抹法（spread plate method）或混稀平板法（pour plate method）加入雙叉桿菌培養基中，置於厭氧操作箱或厭氧缸中（內含厭氧包，或抽氣維持厭氧狀態），於35~37<sup>o</sup>C 培養，計數菌落數。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">至於產氣莢膜梭菌之計數，請依照美國FDA發行的Bacteriological Analytical Manual (BAM)。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> C.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">統計分析 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">實驗數據經統計變異數分析（Analysis of variance ANOVA）測試各實驗組間是否有差異，若有差異再以鄧肯氏多變試驗（Duncan<sup>，</sup>s multiple range test）作進一步分析，以決定各實驗組在95%可信度內是否有差異。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> D.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">結果判定 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">動物實驗:：若盲腸或糞便的bifidobacteria明顯增加，以及<em><span>Clostridium perfringens</span></em>減少或無明顯變化者，則稱之具改善腸內細菌相功能。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人體試驗：若bifidobacteria明顯增加，以及<em><span>Clostridium perfringens</span></em>減少或無明顯變化者，則稱之具改善腸內細菌相功能。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">附註<strong>：</strong> 厭氧稀釋液之製備如下<strong>： </strong></span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">Gelatin 0.2 g</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">Distilledwater 50 mL</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">Salts solution</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（如2.1.3中salts solution配方） 50 mL</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">Resazurin solution</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（25 mg/100 mL H<sub>2</sub>O） 0.4 mL</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">將各成分混合，煮沸，冷卻，再加入0.05 g cysteine，`以厭氧操作分裝入試管中，每一試管裝9 mL，以121<sup> o</sup>C殺菌15 min，殺菌完成或實驗過程呈粉紅色，請勿使用。 </span></p><p style="text-align: justify; line-height: 19pt;"><strong><span style="font-family: 標楷體;"></span></strong></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">四、幫助（改善）胃腸運動，促進腸道正常機能之維持 </span></strong></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（一）動物實驗： </span></strong></p><p style="text-indent: -18pt; margin-left: 36pt;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">1.<span style="font: 7pt/normal times new roman; font-size-adjust: none; font-stretch: normal;"> </span></span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">胃腸運動(活性碳、腸鋇計檢查或核子醫學檢查) </span></p><p style="text-indent: -18pt; margin-left: 36pt;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">2.<span style="font: 7pt/normal times new roman; font-size-adjust: none; font-stretch: normal;"> </span></span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">胃黏膜保護 </span></p><p style="text-indent: -18pt; margin-left: 36pt;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">3.<span style="font: 7pt/normal times new roman; font-size-adjust: none; font-stretch: normal;"> </span></span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">觀察糞便之乾重、粒數、水分及形狀 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（二）人體實驗： </span></strong></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">腸運動(腸鋇計檢查或核子醫學檢查)</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">觀察排便時間，糞便重量、水分及形狀及排便感覺之變化。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（三）檢查方法 </span></strong></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">胃腸運動測定:</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">(a)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">動物實驗 </span></p><p style="text-indent: -18pt; margin-left: 36pt;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">1.<span style="font: 7pt/normal times new roman; font-size-adjust: none; font-stretch: normal;"> </span></span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">離體實驗：擷取絕食老鼠之胃或腸片段約1-2cm，放於組織浴（organ bath）中並通氣之（95%O2，5%CO2），放置2hr使其穩定而後做等長收縮（0.5-1 gm），視測試食品對於胃或腸片段之收縮情況，若實驗組明顯優於控制組（p<0.05），即可判定，即可判定測試食品具有改善胃腸運動之功能。 </span></p><p style="text-indent: -18pt; margin-left: 36pt;"><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">2.<span style="font: 7pt/normal times new roman; font-size-adjust: none; font-stretch: normal;"> </span></span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">活體實驗：動物配置的灌胃溶液灌食（含有10%活性碳及測試物）。而後追蹤計算排空率，活性碳則以黑色易觀察之特性作為胃腸排空之另一指標。30分鐘後，大白鼠去頭犧牲，隨後剪開腹腔以線綁住賁門處，將胃、小腸完整取出，計算胃腸排空率，方法如下： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> charcoal marker</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">Charcoal Transit =---------------------------- × 100%</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> Intestinal length</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> (b)</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">人體實驗 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">核子醫學檢查:目前只使用於gastric emptying study</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> —</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">讓病人服下含有放射源(Tc-99m and In-i11)的固體及液體食物 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> —</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">測量病人90分後的胃排空率 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">放射線科檢查:小腸排空速度檢測 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> —</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">請病人喝下600 cc鋇鹽（barium salt）後，隔15分透視一次， </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">直到鋇鹽完全排出迴腸辮（ileocecal valve）。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">(</span></strong><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">四) 結果判定：</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">糞便重量或粒數明顯增加，再加上胃腸運動實驗或排便時間中有任何一項結果為實驗組明顯優於控制組(p<0.05)，即可判定測試食品具有潤腸通便之功能。 </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">五、有助於胃黏膜之保護作用，維持腸道正常機能</span></strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（一）實驗內容： </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">離體實驗：培養鼠胃黏膜細胞，先將測試物至於胃黏膜細胞內，培養2小時，而後置入酸性培養液（pH=4）或含indomethacin之培養液下。測定胃黏膜細胞之存活率（viability）的變化（MTT assay），若實驗組明顯優於控制組（p<0.05），即可判定測試食品具有保護作用之功能。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">活體實驗：胃酸的分泌測定：Shay 潰瘍法 （Shay’s ulcer） </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">雄性實驗絕食老鼠（24小時），胃部幽門結紮，再予以縫合復原，俟4小時候，將其犧牲取出胃部，收集胃液並定量胃液體積，並以0.1N NaOH溶液滴定，求其實驗組及控制組之總酸度之變化若p<0.05，即可判定測試食品具有胃黏膜保護作用之功能。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（二） <strong>結果判定：</strong>任何一項結果為實驗組明顯優於控制組(p<0.05)，即可判定測試食品具有幫助胃黏膜保護之功能。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">六、減少胃內幽門螺旋桿菌 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（一）受試者的篩選 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">志願參與者先填寫一份問卷，包括個人飲食、生理習慣及健康狀況（含是否有慢性病， </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">需要隨時服藥等）。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">體檢，包括醫生問診、體位測驗、及血液生化檢查（含血紅素、血球比容、血糖、血脂肪、肝功能及腎功能）。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 3.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">依據前兩項的資料，篩去習慣特異及健康不良的參與者。然後填寫志願書，進行尿素呼氣試驗（urea breath test），以得13CO2 /12CO2比值（即ΔUBT值）。就ΔUBT值決定受試對象（建議ΔUBT＞10％O者）。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（二）實驗方法 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">受試者在實驗開始前三週每四天測一次ΔUBT值，以觀察其日常飲 食是否影響該值；並計算其平均值，以作為實驗開始後的比較。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">每位受試者於實驗前必須接受飲食指導。實驗開始前須經2～3週之穩定期，於穩定期間應按其個人之原飲食習慣攝食，並避免暴飲暴食或其他特殊食物之攝取，且亦不可服用整腸健胃藥物、補充劑、抗生素、組織胺-2拮抗劑、抗氧化劑、強調整腸健胃的機能性食品，或其他不明藥物等。並於該其間進行幽門螺旋桿菌之測試，而獲得至少最後之3次為近似恆定值，其平均值作為實驗之起始值（initial value）。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 3.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">實驗期間（最少二週）的飲食按上述穩定期間之條件進食，且加食試 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">驗品穩定與實驗期間定期測量其ΔUBT值、血液生化檢查、體檢、與問卷調查，以瞭解其實驗期間健康情形及身體的感覺。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 4.ΔUBT</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">值測定：受試者在受試前一天晚上10點以後禁食，次晨刷牙、漱口，靜坐5分鐘後飲用200 mL的0.1 N檸檬酸溶液，漱口、靜坐10分鐘後，吹氣至2支10 mL的氣體收集管。再靜坐5分鐘後飲用50 mL含13C標識的尿素（50 mg）溶液，再漱口、靜坐10～20分鐘後，吹氣至2支10 mL的氣體收集管。所收集的氣體以isotope ratio mass spectrometer（IRMS）分析其ΔUBT值。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">（三）結果判定 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 1.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">若受試者之ΔUBT值於實驗後比實驗前有明顯（p＜0.05）降低，則表示該試驗品具有減少幽門螺旋桿菌之生理功能。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> 2.</span><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">經體檢及問卷調查結果，若於實驗期間及實驗後一週沒有明顯不舒服的感覺或其他健康問題，特別是腸胃道問題，則可判斷該試驗品沒有安全上的問題。 </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;"> </span></p><p><strong><span style="font-family: 標楷體; font-size: 13.5pt;">參考文獻 </span></strong> </p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">1.Muñoa, F. J. and Pares, R. (1988) Selective medium for isolation and enumeration of Bifidobacterium spp. Appl. Environ. Microbiol. 54: 1715 - 1718.<br></br><br></br>2.Tanaka, R. and Mutai, M. (1980) Improved medium for selective isolation and enumeration of Bifidobacterium. Appl. Environ. Microbiol. 40: 866-869.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">3.FDA. 1992. Clostridium perfringens. In “Bacteriological Analytical Manual”. 7th edition, Chap. 16. pp.209-214. U.S. Food and Drug Administration. Washington, DC.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">4.Ishibashi, N. and Shimamura, S. (1993) Bifidobacteria: Research and development in Japan. Food Tech. 47(6): 126-135.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">5.Mitsuoka, T. (1978) Intestinal Bacteria and Health . Harcourt Brace Jovanovich Japan Inc. Tokyo.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">6.Hoover, D. G.(1993) Bifidobacteria: Activity and pontential benefits. Food Tech. 47(6): 120-124.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">7.Robison,C. H., Lawler, M. R., Wanda, L. C. and Garwick, A. E. (1990) Normal and Therapeutic Nutrition 17th edition . Macmillan Publishing Company, NY. </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">8.Miller, M. S., Galligan, J. J. and Burks, T. F. (1981) Accurate measurement of intestinaltransit in the rat. J. Pharmacol. Meth. 6: 211-217.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">9.Holtze, P. (1985) Stimulation and inhibition of gastrointestinal propulsion induced by substance P and substance K in the rat. Br. J. Pharmacol. 86: 305-312.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">10.Green, A. F. (1959) Comparative efffects of analgesics on pain threshold,respiratory frequency and gastrointestinal propulsion. Br. J. Pharmacol. 14: 26-34.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">11.Takagi, K. and Okabc, S. (1968) The effect of drugs on the production and recovery processes of the stress ulcer. Japan. J. Pharmacol. 18: 9-18.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">12.Shay, H., Komarov, S. A., Fels, S., Meranxe, S., Gruenstein, D. and Siplet, H. (1945) A simple method for the uniform production of gastric ulceration in the rat. Gastroenteroloty 5: 43-61.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">13.Takagi, K., Okabc, S. and Saziki, R. (1969) A new method for the production of chronic gastric ulcer in rats and the effect of several drugs on its healing. Japan. J. Pharmacol. 19: 418-426.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">14.Waisman, G., Dinari, G., Marcus, H., Ligumsky, M., Rosenbach, Y., Zahavi,I. and Nitzan, M. (1985) Naloxone is protective against indomethacin-induced intestinal ulceration in the rat. Gastroenteroloty 89: 86-91. </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">15.McNeely MDD (1996) Gastrointectinal function a digestive disease. In Clinical Chemistry, Pesce, A.J., Kaplan, L.A., editors, Pesce Kaplan Publishers.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">16.Sleisenger MH, Fordtran JS (1993) Gastrintertinal disease vol.2, P 1593-1594, W.B. Saunders Compary.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">17.Brandt LJ (1999) Clinical practice of Gastroenterrlopy, Vol.2, P 1190, Churchill livingstone compary.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">18.Dahlqvist, A.(1964) Method for assay of intestinal disaccharidase. Anal. Biochem. 7: 18-25.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">19.Peterson, G.L.(1977) A simplification of the protein assay method of Lowry et al. which is more generally applicable. Anal. Biochem.83:346-356. </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">20.Verduin, P.A., Punt, J.M., Kreutzer, H.H. (1973) Studies of the determination of lipase activity. Clin. Chim. Acta 46:11-19.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">21.Martinek, P.G., Berger, L., Broidda, D. (1964) Simplified estimation of leucine aminopeptidase (LAP) activity. Clin. Chem. 10: 1087-1097.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">22.Massion,C.G., McNeely, M.D. (1973) Accurate micromethod for estimation of both medium-and long-chain fatty acids and triglycerides in fecal fat. Clin. Chem. 19: 499-505.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">23.Benson, J. A., Culver, P.J., Ragland, S., Jones, C.M., Drummey, G.D., Bougas,E (1957) The D-xylose absorption test in malaborption syndromes. N.Engl. J. Med. 256: 335-339.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">24.Fuji, Y., Matsura, T., Kai, M., Kawasaki, H. and Yamada, K. (2000) Protection by polaprezinc, and anti-ulcer drug, against indomethacin – induced apoptosis in rat gastric mucosal cells. Jpn J Pharmacol. 84: 63-70. </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">25.Furukawa, O., Nakamura, E. and Okabe, S. (1997) Characterization of a novel cell damage model induced by acid and pepsin using rat gastric epithelial cells: protective effect of sucralfate. J Gastroenterol Hepatol. 12: 115-121. </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">26.Beerens, H. 1990. An elective and selective isolation medium for Bifidobacterium spp. Letters in Applied Microbiology 11: 155 - 157. </span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">27.Chatterjee, A., Yasmin, T., Bagchi, D. and Stohs, S. (2003) The bactericidal effects of Lactobacillus acidophilus, garcinol and Protykin compared to clarithromycin, on Helicobacter pylori. Molecular Cellular Biochem. 243:29-35.</span></p><p><span style="font-family: 標楷體; font-size: 10pt;">28.Wong, W. M., Wong, B. C. Y., Wong, K. W., Fung, F. M. Y., Lai, K. C., Hu, W. H. C., Yuen, S. T., Leung, S. Y., Lau, G. K. K., Lai, C. L., Chan, C. K., Go, R. and Lam, S. K. (2003) 13C-urea breath test without a test meal is highly accurate for the detection of Helicobacter pylori infection in Chinese. Alim. Pharm. Ther. 14:1353-1358.</span></p><p style="line-height: 19pt;"><span style="font-family: arial;"></span></p></span> |
| 發佈日期 | 2003-08-29 |
| 附件下載 | https://consumer.fda.gov.tw/DownLoadMethod/ashx/downloadFile.ashx?id=2254&type=0 |